•Zapewnia wysoce dokładne, pełne i ciągłe składanie genomu od telomeru do telomeru.
•Pokonuje trudności związane z montażem w regionach centromerycznych i obszarach o dużej powtarzalności.
•Analizuje zmiany strukturalne w złożonych obszarach, takich jak centromery i telomery.
•Bada pochodzenie chromosomów i udomowienie oraz identyfikuje kluczowe geny determinujące płeć.
•Profesjonalny, ultradługi zespół zajmujący się ekstrakcją i sekwencjonowaniem, z doświadczeniem w pracy z wieloma gatunkami.
•Dostęp do platform długiego odczytu PacBio i Nanopore o wysokiej przepustowości i elastycznych strategiach sekwencjonowania.
•Doświadczony zespół specjalizujący się w montażu genomu i dostosowanej analizie bioinformatycznej, biegły w projektach genomowych T2T.
•Ponad 200 udanych projektów dotyczących genomu i ponad 2000 skumulowanych współczynników wpływu.
•Zintegrowane rozwiązania eksperymentalne i bioinformatyczne, chronione prawami autorskimi i patentami.
| Badanie genomu | Montaż genomu | Na poziomie chromosomów | Wypełnianie luk | Adnotacja genomu |
| 50X Illumina NovaSeq PE150 | 30X odczytów PacBio CCS HiFi | 100X Hi-C | 40-100X ONT Ultra długie odczyty | RNA-seq Illumina PE150 10 Gb + (opcjonalnie) Pełna długość RNA-seq PacBio 40 Gb lub Nanopore 12 Gb |
W przypadku próbek sekwencjonowania Survey, PacBio CCS, Hi-C i transkryptomu (do adnotacji) należy zapoznać się z „na poziomie chromosomówwymagania dotyczące próbek montażu genomu”.
W przypadku sekwencjonowania ONT o ultradługim okresie przydatności zaleca się stosowanie próbek tkanek o wyższych standardach jakości, aby umożliwić ekstrakcję ultra-HMW DNA.
Aby uzyskać szczegółowe instrukcje i wymagania dotyczące przygotowania próbek, skontaktuj się z naszym zespołem sprzedaży, który pomoże Ci znaleźć rozwiązania dostosowane do danego gatunku.
Główne analizy obejmują:
1) Montaż genomu T2T
● Genom T2T oznacza genom z „0 przerwami”, w którym co najmniej jeden chromosom jest całkowicie zmontowany od telomeru do telomeru.
● Korzystanie z odczytów CCS o wysokiej dokładności i ultradługich odczytów ONT:
* Wygeneruj genom contig v1 poprzez hybrydowy montaż przy użyciu hifiasm (v0.25.0).
* Usuń sekwencje plastydowe i zanieczyszczone za pomocą BLAST w oparciu o bazę danych NT.
* Tworzenie rusztowań kontigów w celu umożliwienia montażu na skalę chromosomów przy użyciu danych Hi-C z wykorzystaniem 3D-DNA.
* Uzupełnij brakujące telomery poprzez lokalne składanie za pomocą odczytów ONT, aby uzyskać ostateczny genom T2T.
2) Ocena montażu
● Ocena BUSCO
BUSCO v5.2.1 (Benchmarking Universal Single-Copy Orthologs) konstruuje zestawy genów jednokopijnych dla głównych linii ewolucyjnych w oparciu o bazę danych OrthoDB 10. Zmontowany genom jest oceniany poprzez porównanie z tym zestawem genów, na podstawie współczynnika dopasowania i integralności.
Wyższy odsetek „kompletnych BUSCO” wskazuje na większą kompletność montażu genomu.
● Odczytuje mapowanie
Dopasuj krótkie odczyty z sekwencjonowania nowej generacji (np. Illumina) do zmontowanego genomu za pomocą bwa. Dopasuj długie odczyty trzeciej generacji do zmontowanego genomu za pomocą Minimap2.
Kompletność zgromadzonego genomu i jednorodność pokrycia sekwencjonowania ocenia się na podstawie szybkości mapowania, współczynnika pokrycia genomu i dystrybucji głębokości.
● Ocena kontroli jakości genomu
Oceń montaż przy użyciu oprogramowania Merqury, porównując odczyty sekwencjonowania o wysokiej dokładności k-merów ze montażem genomu, aby uzyskać jakość konsensusu (QV).
Wyższe wartości jakości wskazują na wyższą dokładność złożonego genomu.
● Ocena LAI genomu
Wskaźnik LAI (LTR Assembly Index) ocenia integralność montażu genomu jako stosunek nienaruszonych sekwencji retrotranspozonów LTR do całkowitej liczby sekwencji LTR. Kandydackie sekwencje LTR-RT są identyfikowane za pomocą programów LTR_FINDER (wersja 1.0.7) i LTRharvest (wersja 1.5.9), a następnie filtrowane i integrowane za pomocą LTR_retriever (wersja 2.8) w celu uzyskania retrotranspozonów LTR o wysokiej wiarygodności i obliczenia wskaźnika LAI.
Zgodnie z publikacją dewelopera LAI, wartości LAI klasyfikuje się na trzech poziomach:
Projekt (0 ≤ LAI < 10), Referencja (10 ≤ LAI < 20) i Złoto (LAI ≥ 20).
● Identyfikacja telomerów i centromerów
Zidentyfikuj potencjalne jednostki powtórzeń telomerów w genomie za pomocą narzędzia TIDK. Wykryj sekwencje telomerów i uzyskaj informacje o ich położeniu za pomocą narzędzia FindTelomeres na podstawie motywów powtórzeniowych.
Zidentyfikuj potencjalne powtórzenia centromerowe, wykorzystując Centromics z długimi odczytami trzeciej generacji, a następnie przemapuj na genom, aby uzyskać pozycje i sekwencje centromeru.
1) Mapa chromosomów genomu
2)Pozycje telomerów w genomie
| Chr | Długość Chr (bp) | Początek_przepływu(bp) | Koniec_góry_prądu(bp) | Długość_przepływu_w_górę (bp) | Downstream_Start(bp) | Koniec_w_dół(bp) | Długość_w_dół(bp) |
| Chr01 | 55 340 768 | 53 | 2036 | 1984 | 55 338 794 | 55 340 768 | 1975 |
| Chr02 | 56 588 289 | 1 | 2760 | 2760 | 56 584 191 | 56 588 289 | 4099 |
| Chr03 | 46 886 733 | 20 | 3001 | 2982 | 46 881 994 | 46 886 733 | 4740 |
| Chr04 | 49 401 798 | 1 | 2143 | 2143 | 49 399 160 | 49 401 798 | 2639 |
| Chr05 | 45 855 317 | 10 | 3043 | 3034 | 45 852 809 | 45 855 317 | 2509 |
| Chr06 | 45 285 625 | 1 | 3268 | 3268 | 45 283 427 | 45 285 625 | 2199 |
| Chr07 | 48 122 726 | 1 | 2317 | 2317 | 48 120 519 | 48 122 726 | 2208 |
Nuwaga:
Chr: Identyfikacja chromosomu
Chr_Length (bp): Długość chromosomu
Upstream_Start (bp): Pozycja początkowa telomeru znajdującego się w górnym biegu chromosomu
Upstream_End (bp): Pozycja końcowa telomeru znajdującego się w górnym biegu chromosomu
Upstream_Length (bp): Długość telomeru znajdującego się w górnym biegu chromosomu
Downstream_Start (bp): Pozycja początkowa telomeru znajdującego się niżej na chromosomie
Downstream_End (bp): Pozycja końcowa telomeru znajdującego się niżej na chromosomie
Downstream_Length (bp): Długość telomeru znajdującego się w dół chromosomu
3)Pozycje centromeru w genomie
| Chr | Chr_Length(bp) | Centromics_Start(bp) | Centromics_End(bp) |
| Chr01 | 55 340 768 | 18 943 204 | 23 005 555 |
| Chr02 | 56 588 289 | 28 114 720 | 30 677 916 |
| Chr03 | 46 886 733 | 24 487 558 | 24 929 326 |
| Chr04 | 49 401 798 | 20 976 875 | 22 563 388 |
| Chr05 | 45 855 317 | 18 578 095 | 19 715 924 |
| Chr06 | 45 285 625 | 19 398 436 | 19 950 173 |
| Chr07 | 48 122 726 | 26 390 720 | 27 913 284 |
Notatka:
Chr: Identyfikacja chromosomu
Chr_Length (bp): Długość chromosomu
Centromer_Start (bp): Pozycja początkowa centromeru na chromosomie
Centromer_End (bp): Pozycja końcowa centromeru na chromosomie
4) Statystyki luk w wynikach montażu
| Grupa | Numer_luki | Len |
| Chr01 | 0 | 55 340 768 |
| Chr02 | 0 | 56 588 289 |
| Chr03 | 0 | 46 886 733 |
| Chr04 | 0 | 49 401 798 |
| Chr05 | 0 | 45 855 317 |
| Chr06 | 0 | 45 285 625 |
| Chr07 | 0 | 48 122 726 |
| Razem (wskaźnik %) | 0 | 347 481 256 (100,00) |
Nuwaga:
Grupa: Identyfikacja chromosomu
Gap_Number: Liczba przerw na chromosomie
Len (bp): Długość chromosomu
5) Ocena LAI genomu
| Chr | Długość Chr (bp) | Nienaruszony | Całkowity | raw_LAI | LAI |
| cały_genom | 347 481 256 | 0,046 | 0,36 | 12,94 | 15.18 |
Uwaga: Zgodnie z publikacją twórców LAI, wartości LAI są klasyfikowane do trzech kategorii: Wersja robocza (0 ≤ LAI < 10), Referencyjna (10 ≤ LAI < 20) i Złota (LAI ≥ 20).
Długość Chr (bp): Długość chromosomu
Nienaruszone: Proporcja nienaruszonych LTR-RT w genomie
Razem: Proporcja całkowitej liczby LTR w genomie
raw_LAI = Nienaruszony / Całkowity × 100
LAI: Skorygowana wartość LAI
Zapoznaj się z postępem technicznym, jaki osiągnięto dzięki usługom montażu genomu de novo firmy BMKGene, zapoznając się z wybranym zbiorem publikacji:
T2T Genome
Liu, Shoucheng i in.„Złożenie genomu telomer-telomer w połączeniu z danymi multiomicznym pozwala na lepsze zrozumienie ewolucji heksaploidalnej pszenicy chlebowej.”Genetyka natury tom. 57,4 (2025): 1008-1020. doi:10.1038/s41588-025-02137-x
Yao, Xue-Feng i in.„Kompletny genom ryżu japońskiego odmiany Zhonghua 11.”Komunikacja roślinna tom 6,10 (2025): 101463. doi:10.1016/j.xplc.2025.101463
Lv, Zhiyuan i wsp.„Składanie genomu od telomeru do telomeru u Camellia pitardii.”Dane naukowe tom. 12,1 1422. 14 sierpnia 2025, doi:10.1038/s41597-025-05764-5
Du, Haiyuan i wsp.„Prawie kompletny genom Fragaria iinumae.”Genomika BMC tom. 26,1 253. 14 marca 2025, doi:10.1186/s12864-025-11440-0
Chen, Weikai i in.„Kompletny genom Nicotiana benthamiana ujawnia genetyczny i epigenetyczny obraz centromerów.”Rośliny naturalne tom. 10,12 (2024): 1928-1943. doi:10.1038/s41477-024-01849-y
Genom T2T z ustalonym haplotypem
Khan, Falak Sher i in. „Genomy T2T bez luk w haplotypie odmiany winorośli Cabernet Sauvignon”.Dane naukowe, 10.1038/s41597-026-06910-3. 26 lutego 2026 r., doi:10.1038/s41597-026-06910-3
Genom T2T + genom porównawczy
Hong, Lin i in. „Konstrukcja i analiza genomów telomer-telomer dla dwóch słodkich pomarańczy: Longhuihong i Newhall (Citrus sinensis)”.GigaNaukatom 13 (2024): giae084. doi:10.1093/gigascience/giae084
Li, Xiao-Jie i in. „Analiza genomu telomer-telomer TXH4 czerwonej marchwi wyjaśnia rolę DcLCYE i DcLCYB1 w akumulacji likopenu w marchwi”.Badania ogrodniczetom. 12,11 uhaf192. 29 lipca 2025, doi:10.1093/godz./uhaf192
Genom T2T + Pangenom
Wang, Xiaojing i in. „Genom T2T, analiza całego genomu i geny odpowiedzi na stres cieplny u gatunków rododendronów”.iMetatom. 4,2 e70010. 5 marca 2025, doi:10.1002/imt2.70010